--- title: "Exemplo: Estimação de área foliar doente" author: "Alcinei Mistico Azevedo (ICA-UFMG)" date: "`r Sys.Date()`" output: rmarkdown::html_vignette fig_caption: yes vignette: > %\VignetteIndexEntry{Exemplo: Estimação de área foliar doente} %\VignetteEngine{knitr::rmarkdown} %\VignetteEncoding{UTF-8} --- ```{r, include = FALSE} knitr::opts_chunk$set( collapse = TRUE, comment = "#>" ) ``` # Introdução Obrigado por utilizar o pacote `ExpImage`. Este pacote foi desenvolvido a fim de facilitar o uso da análise de imagens na obtenção de várias informações sobre os objetos que elas contém. Para a utilização do pacote é indispensável a instalação do pacote `EBImage`. Geralmente, este pacote pode ser instalado ao executar os seguintes comandos: `if (!requireNamespace("BiocManager", quietly = TRUE))` `install.packages("BiocManager")` `BiocManager::install("EBImage")` Porém se houver problemas na instalação sugerimos que consulte mais opções de instalação no site: https://bioconductor.org/packages/release/bioc/html/EBImage.html Para instalar o pacote ´ExpImage´ basta utilizar o seguinte comando: `install.packages("ExpImage")` Convidamos a todos os usuários do ExpImage que venha conhecer nossos materiais didáticos sobre este e outros pacotes nos seguintes links: https://www.youtube.com/channel/UCDGyvLCJnv9RtTY1YMBMVNQ https://www.expstat.com/ # Abrindo as imagens no R ## Ativação dos pacotes Após a instalação dos pacotes é necessário fazer sua ativação ```{r} library(EBImage) library(ExpImage) ``` ## Abrindo as imagens. Para abrir as imagens pode-se inicialmente indicar a pasta de trabalho onde a imagem se encontra com a função `setwd`. E, posteriormente, abrir a imagem com a função `read_image`. Neste caso, poderiam ser utilizados comandos como esses: `#Apagar memoria do R` `remove(list=ls())` `#Indicar a pasta de trabalho` `setwd("D:/Backup Pendrive/")` `im=read_image("Imagem.jpeg",plot=TRUE)` Neste exemplo utilizaremos uma imagem contida em um link na internet: ```{r} # Obtendo o endereço da imagem de exemplo im=read_image("https://raw.githubusercontent.com/AlcineiAzevedo/CursosImagem/main/amendoim.jpg",plot=TRUE) ``` # seleção de banda ou índice para posterior segmentação Inicialmente deve-se escolher um índice ou banda que proporcionará maior contraste entre a folha (foreground) e o fundo (background). ```{r} r=gray_scale(im,method = "r",plot=T) g=gray_scale(im,method = "g",plot=T) b=gray_scale(im,method = "b",plot=T) ``` Como foi possível observar, quando se utilizou a banda de verde foi possível obter melhor contraste entre a parte doente e sadia na folha. Além disso, possibilita também a segmentação da folha em relação ao fundo. Logo, podemos considerar essa banda como a melhor para fazer o processo de segmentação. A segmentação pode ser feita considerando-se um limiar. Ou seja, um valor a partir do qual os pixeis serão consideradas como background ou foreground. O melhor valor de limiar pode ser obtido pela tentativa e erro: ```{r} MatrizSegmentada0.3=segmentation(g,treshold = 0.30,fillHull = F,selectHigher = F,plot=T) MatrizSegmentada0.4=segmentation(g,treshold = 0.40,fillHull = F,selectHigher = F,plot=T) MatrizSegmentada0.6=segmentation(g,treshold = 0.60,fillHull = F,selectHigher = F,plot=T) MatrizSegmentada0.8=segmentation(g,treshold = 0.80,fillHull = F,selectHigher = F,plot=T) ``` Como foi possivel observar. Quando se utiliza o limiar de 0.3 é possível destacar o que é doença. E, quando se utiliza o limiar de 0.8, destaca-se o que é a folha. Assim, pode-se obter a porcentagem de área danificada pela razão entre o número de pixels correspondente a área lesionada em função da área total: ```{r} 100*(sum(MatrizSegmentada0.3)/sum(MatrizSegmentada0.8)) ``` Para verificar se a classificação da área danificada está correta, podemos destacar a área doente na imagem: ```{r} im3=mask_pixels(im,TargetPixels=MatrizSegmentada0.3==1,col.TargetPixels = "red",plot=F) im3b=mask_pixels(im,TargetPixels=MatrizSegmentada0.3==1,Contour =TRUE,col.TargetPixels = "red",plot=F) im4=join_image(im,im3,im3b,plot=T) ```